Come analizzare l'elettroforesi

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Autore: John Stephens
Data Della Creazione: 23 Gennaio 2021
Data Di Aggiornamento: 26 Novembre 2024
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Come analizzare l'elettroforesi - Scienza
Come analizzare l'elettroforesi - Scienza

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Nell'elettroforesi su gel, i campioni di DNA o proteine ​​vengono separati - in genere in base alla dimensione - applicando un campo elettrico che li fa migrare attraverso un gel. L'uso dell'elettroforesi su gel è di routine nei laboratori di ricerca biomedica e viene utilizzato per rispondere a una varietà di domande diverse, quindi non esiste davvero un modo universale per analizzare i risultati.

Tecniche diverse come la Western blotting, la Northern blotting e la Southern blotting, ad esempio, comportano tutte elettroforesi su gel.

Se si esegue l'elettroforesi su gel di agarosio dei campioni di DNA, il tipo più comune di procedura, in genere è necessario eseguire almeno due cose: 1) distinguere i plasmidi non tagliati dagli inserti, i plasmidi intaccati e i plasmidi tagliati e, 2) stimare le dimensioni dei vari Frammenti di DNA con una curva standard Excel o calcolatrice.

Ecco come funziona.

    Controlla il tuo quaderno di laboratorio per determinare quali campioni sono stati caricati in quali corsie. Quando hai caricato i pozzetti per il tuo gel, dovresti aver notato l'identità di ogni corsia / campione.

    Determina quale corsia contiene la "scala" degli standard del DNA. Questi sono frammenti di lunghezza nota; la loro distanza di migrazione può essere utilizzata per determinare la dimensione dei frammenti del campione usando una curva standard Excel o un altro calcolatore.

    Usando un righello, misura la distanza della tua immagine dai pozzetti al colorante di tracciamento, che avrà viaggiato oltre le bande di DNA (in altre parole, sarà nella parte inferiore del gel). Registra questo numero: le unità che usi non sono importanti.

    Misura la distanza sulla tua immagine dai pozzi a ciascuna delle bande nella "scala", quindi dividi quella distanza per la distanza percorsa dalla banda di tintura di tracciamento. Questo calcolo ti dà la mobilità relativa di ogni banda.

    Esempio: supponiamo che la banda di tintura di tracciamento abbia viaggiato di 6 pollici e abbiamo tre bande che hanno viaggiato di 5, 4,5 e 3,5 pollici.

    Qual è la loro mobilità relativa? Risposta: Dividiamo 5, 4,5 e 3,5 per 6 per ottenere mobilità relative di 0,833, 0,75 e 0,5833.

    Inserisci le mobilità relative nel tuo programma di foglio di calcolo (Excel o qualsiasi altro programma simile che usi) insieme alla dimensione in kilobase di ciascun frammento nella scala.

    Il produttore ti fornisce la dimensione di ogni frammento nelle scale che forniscono, quindi dovresti già avere queste informazioni.

    Rappresenta graficamente i dati con relativa mobilità sulla xe dimensione in kilobasi sulla y.

    Utilizzare la funzione Trendline sul programma di foglio di calcolo per adattare un'equazione ai dati. Questa equazione dovrebbe essere un'equazione di potenza (ad esempio x ^ -2) e dovrebbe adattarsi relativamente bene ai dati (coefficiente R di almeno 0,9). Questo crea una curva e una curva standard Excel.

    Guarda le bande corrispondenti ai tuoi campioni.

    Ricorda che frammenti di DNA più piccoli viaggiano più lontano attraverso il gel rispetto a frammenti di DNA più grandi, quindi quelli più vicini al colorante di tracciamento saranno i più piccoli. Si noti, tuttavia, che se il DNA plasmidico (circolare) non è tagliato, diventerà "superavvolto" o attorcigliato come un cavo telefonico, il che lo farà effettivamente viaggiare più lontano del DNA lineare della stessa dimensione.

    Allo stesso modo, un plasmide "intaccato" che è stato tagliato in modo incompleto viaggerà a più breve distanza dal DNA lineare della stessa dimensione. Di conseguenza, non è possibile stimare la dimensione dei plasmidi non tagliati dal gel.

    Abbina le bande in ciascuna corsia con l'identità del campione che hai caricato in quella corsia e determina se ciò che vedi è quello che ti aspettavi. Questo dipenderà dalla natura del tuo esperimento.

    In generale, tuttavia, se si digerisce un plasmide di inserto con due enzimi di restrizione, ci si aspetterebbe che l'inserto venga liberato dal plasmide.

    Dato che è molto più piccolo del plasmide, ti aspetteresti di vedere due bande in quella corsia, una vicino alla cima e l'altra verso il basso. Un taglio plasmidico con un solo enzima di restrizione dovrebbe formare una sola banda che viaggia un po 'più lontano del taglio plasmidico con due enzimi di restrizione, ma in nessun punto vicino all'inserto.

    Misura la distanza dai pozzetti al plasmide tagliato e inserisci le bande con il righello. Dividi questi numeri per la distanza percorsa dal colorante di tracciamento per trovare la mobilità relativa degli inserti e tagliare i plasmidi.

    Collega la mobilità relativa degli inserti e taglia i plasmidi nell'equazione calcolata per te dal tuo foglio di calcolo. Questo calcolo dovrebbe darti una stima della dimensione di questi plasmidi.

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